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石蠟切片的制作過程(簡述石蠟切片的制作過程)

石蠟切片的制作方法?

石蠟切片的制作方法?

腸道的石蠟切片的制作

(1) 取材:用鋒利的刀切取羅非魚的一小段前腸(據胃5cm左右位置的前腸),組織塊的規格為 3~5mm×3~5mm×10~15mm。

(2) 固定:采用Bouin氏固定液裝瓶固定,固定液用量一般為組織塊體積的10~20倍。

(3) 沖洗:固定12~24h后,將材料自固定液中取出后,在70%酒精中換洗幾次,可在酒精中加幾滴氨水至洗去黃色為止。

(4) 脫水:70%酒精(1h)→80%酒精(1h)→90%酒精(1h)→95%酒精(1h)→無水乙醇Ⅰ(1h)→無水乙醇Ⅱ(1h)

(5) 透明:無水乙醇與二甲苯溶液(1:1)(1h)→二甲苯Ⅰ(1h)→二甲苯Ⅱ

(1h)

(6) 浸蠟:浸蠟的全過程應在恒溫設備中進行,將恒溫箱調至58℃。

二甲苯與石蠟混合液(1:1)(1h)→石蠟Ⅰ(1h)→石蠟Ⅱ(1h)

浸蠟必須徹底,否則組織內殘留透明劑會造成切片過程的困難和影響切片

的質量。

(7) 包埋:在小紙盒內注入溶化的石蠟,將已浸蠟的組織塊置入其內,使蠟塊迅速冷卻硬固,組織塊在蠟塊中可長期保存。

(8) 切片:包埋后的組織塊經修整后,用切片機切成5~7μm的石蠟帶。

(9) 粘片:將組織石蠟帶在50攝氏度的溫水中展片,然后用經1%HCl溶液處理干凈的載玻片撈片,組織帶即可粘在載玻片上。

(10) 烤片:將粘好的載玻片置于35℃左右的溫箱中烤干,待2~3小時后,即可取下編號。

(11) 蘇木精—伊紅染色:將烤干的片進行染色。

①脫蠟:將烤干的切片放入二甲苯(I)10min→二甲苯(Ⅱ)10rain。

②復水:將脫蠟后的切片移入100%酒精5min→95%酒精5min→85%酒精5min→70%酒精5min→蒸餾水5min

③HE染色顯示腸道黏膜上皮內淋巴細胞:將蒸餾水洗滌后的切片移入Harris蘇木精液中,10min,使細胞核著色;用自來水洗去切片上殘余染液;用1%的鹽酸酒精分色3秒;用自來水浸洗3h,顯微鏡下觀察,直到胞核藍化為止;然后切片入曙紅溶液中染色5min,使細胞質著色。經95%酒精與100%酒精脫水,二甲苯透明后,中性樹膠封片。

④奧新蘭一沙黃染色顯示腸道內肥大細胞:切片常規脫蠟下行至蒸餾水→奧新蘭一沙黃液染色15~20min→蒸餾水速洗,鏡檢→95%和100%酒精分色脫水1—2min→二甲苯透明→中性樹膠封片。

⑤阿利新蘭醋酸染色顯示腸道內杯狀細胞:切片經脫蠟下行入蒸餾水→阿利新蘭醋酸染色10min→蒸餾水洗→1%高碘酸水液氧化5min→蒸餾水略洗一Schiff試劑染色(37℃恒溫箱)30min→普通水洗3次→蒸餾水2min→Ehrlich蘇木精染色5min→95%酒精和100%酒精脫水→二甲苯透明,中性樹膠封片。

切片經脫蠟下行入水:二甲苯(30 min)一二甲苯(10 min)一無水乙醇(5 min)一無水乙醇(5 min)一

95% 乙醇(5 min)一85%乙醇(5 min)一70% 乙醇(5 min)一流水沖洗(20 min)。人Ehrlich蘇木精染

色12 min,蒸餾水速洗。鹽酸酒精分色,鏡檢控制時間。入伊紅染色2 min,蒸餾水略洗。鹽酸酒精分色,鏡檢控制時間。經95%酒精與無水酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片。

阿利新蘭—番紅復合染色液的方法稱Scaba法

阿利新蘭—番紅分別染色的方法稱Spicer法

石蠟切片如何快速操作完成?

石蠟切片如何快速操作完成?

(一)應用范圍

(1)替代冷凍切片,在沒有條件制作冷凍切片的單位,用作術中診斷;

(2)快速診斷:適用于門診外地患者,1天可取報告。

(二)切片制作

(1) 將送檢的各類組織按《規范》(一)編號登記、眼觀、描述記錄后,用大頭針和羊皮紙包好,投入配制好的固定液燒杯內5~10min(固定液配制:95%乙醉85ml,甲醛10ml,冰醋酸5ml);若組織較厚,可在預固定后修薄,重復固定;

(2)無水乙醇、丙酮脫水3~5min;

(3)浸蠟5min;

(4)常規石蠟包埋,或封固于預制好的蠟塊內;

(5)常規HE加溫染色。

(三)注意事項

(1) 制作快速石蠟切片全過程過程均加溫在65~72℃范圍內操作,可用快速組織處理儀、或在恒溫水浴鍋或恒溫箱內完成;

(2) 替代冷凍切片可隨到即做,一般在30min內完成;若成批操作,則可根據標本的數量多少,酌情延長時間;

(3) 制作快速石蠟切片,操作人員必須經過一段時間的訓練和摸索,在取得一定經驗、技術較熟練能保證切片質量后,方可受理對外服務,以把好質量關

如何制作石蠟切片?

如何制作石蠟切片?

[1]請教丁老師如何制作皮膚的石蠟切片

一 皮膚組織標本制作及常用染色方法概述

皮膚組織標本常規以福爾馬林固定,石蠟包埋,蘇木素-伊紅(Hematoxylin eosin HE)染色。皮膚組織的制片及染色技術與普通病理相同:標本固定-水洗-硬化、脫水-透明-包埋-切片-染色。但皮膚組織亦有其自身特點,如表皮細胞層次多,纖維及脂肪組織豐富,在取材及固定方面有其特殊性,制片及染色過程也應注意其特點,以提高制片質量。

二 取材

a取材要足夠大,應包括一小部分正常組織,以便與病理組織對照,因許多皮膚病的典型病變在真皮深層或皮下組織,故還應包括皮下組織,

b多數情況下應選擇充分發展的損害,早期損害常為非特異性,晚期損害的病變大都處于恢復或變性、壞死階段,充分發展的損害容易找到典型病變而明確診斷,還應盡量選擇損害的活動邊緣部分,中央部分可能病變已趨向于消退而找不出典型病變。對于水皰性、膿皰性以及含有病原體的損害應取早期損害,否則,若發生繼發性改變(如變性、再生或繼發性感染)可能隱蔽了重要病變的組織形態,同時,很難辨別病變形成的過程,

c盡量避免切除腋窩或腹股溝等部位皮膚組織,因該處皮膚由于磨擦,搔抓等常有萎縮,

d如疑有血管性或血液性疾患,最好不要取下肢標本,因下肢常有血液停滯或其它肢端血管病,皮內可能有含鐵血黃素沉著,

e對某些腫瘤,如角化棘皮瘤,Spitz痣等,應盡可能將腫瘤全部切除,若不能全部切除,則最好自腫瘤中心至邊緣取一楔形標本,以供組織學檢查。

三 固定

切下皮膚愈早固定愈好,夏天超過4小時,冬天超過24小時,標本體積就要收縮變形或發生自溶。常用固定液為10%中性福爾馬林,其總體積應為組織塊總體積的7~10倍,用10%福爾馬林固定小塊組織(1.5 cm×1.5 cm×0.2cm)數小時即可,時間稍長對制片影響不大,隨著溫度的增高可縮短固定時間,對固定時間過長的標本,可在制作切片時,用流水沖洗24小時,甚至48小時,以免影響染色效果。

四 脫水、包埋、切片及染色

皮膚組織常用酒精脫水、二甲苯透明、石蠟包埋,切片厚度一般為5μm~7μm,與普通病理切片操作程序相同。HE染色法方便、經濟,結果穩定,95%以上的組織切片都可以在HE染色下作出診斷,是皮膚組織病理最常用的方法。

[2]http://www.pathology-home.com/html/pathology/20051207_1.asp

自己點進去看吧,太多了 復制不了

小鼠肝組織石蠟切片具體怎么做?

一般來說是要的,但也要根據具體實驗要求決定(比如你要觀察一些什么東西啦,對結構的完整性要求有多高啦)甲醛能固定一般組織,但溶解肝糖和色素。

注意:1.材料必須新鮮,擱置時間過久則產生蛋白質分解變性,導致細胞自溶及細菌的滋生,而不能反映組織活體時的形態結構。

2.固定液的種類很多,其對組織的硬化收縮程度以及組織內蛋白質、脂肪、糖類等物質的e799bee5baa6e79fa5e98193e4b893e5b19e31333239306636作用各不相同。例如純酒精可固定肝糖而能溶解脂肪,甲醛能固定一般組織,但溶解肝糖和色素。固定液可分為單一固定液及混合固定液。前者有甲醛(蟻醛、福爾馬林)、酒精、醋酸或冰醋酸、升汞、鋨酸(四氧化鋨)、重鉻酸鉀及苦味酸等,單一固定液不能固定細胞中的所有成分;混合固定液可以互補不足,常用的混合固定液有Bouin氏液、Zenker氏液、FAA液、Carnoy氏液、SuSa液(配方見有關技術書籍)。

過程:

1.取材

2.固定

3.洗滌與脫水

4.透明

5.浸蠟與包埋

6.切片

7.貼片與烤片

8.切片脫蠟及水化

9.染色

10.切片脫水、透明和封片

切片刀的銳利與否、蠟塊硬度適當都直接影響切片質量,可用熱水或冷水等方法適當改變蠟塊硬度。通常切片厚度為4~7微米,切出一片接一片的蠟帶,用毛筆輕托輕放在紙上。

小鼠脾臟石蠟切片如何制作

你碰對人了,正好我這些天在做假復層立方上皮的切片 其實切片很好做,最關鍵的就是你的切片機切出的薄厚怎么樣 下面我給你說說程序:1、取材與固定:

小鼠肺石蠟切片如何制作

展開全部

其實切片很好做,最關鍵的就是你的切片機切出的薄厚怎么樣

下面我給你說說程序:

1、取材與固定:?

從人或動物新鮮尸體上取下組織塊(一般厚度不超過0.5厘米)投入預先配好的固定液中(10%福爾馬林,Bouin氏固定液等)使組織、細胞的蛋白質變性凝固,以防止細胞死后的自溶或細菌的分解,從而保持細胞本來的形態結構。?

2、脫水透明:

一般用由低濃度到高濃度酒精作脫水劑,逐漸脫去組織塊中的水份。再將組織塊置于既溶于酒精,又溶于石蠟的透明劑二甲苯中透明,以二甲苯替換出組織塊的中酒精,才能浸蠟包埋。

?3、浸蠟包埋:

將已透明的組織塊置于已溶化的石蠟中,放入溶蠟箱保溫。待石蠟完全浸入組織塊后進行包埋:先制備好容器(如折疊一小紙盒),倒入已溶化的石蠟,迅速夾取已浸透石蠟的組織塊放入其中。冷卻凝固成塊即成。包埋好的組織塊變硬,才能在切片機上切成很薄的切片。

?4、切片與貼片:?

將包埋好的蠟塊固定于切片機上,切成薄片,一般為5—8微米厚。切下的薄片往往皺折,要放到加熱的水中燙平,再貼到載玻片上,放45℃恒溫箱中烘干。

?5、脫蠟染色:?

常用HE染色,以增加組織細胞結構各部分的色彩差異,利于觀察。蘇木精(Hematoxylin,H)是一種堿性染料,可將細胞核和細胞內核糖體染成藍紫色,被堿性染料染色的結構具有嗜堿性。伊紅(Eosin,E)是一種酸性染料,能將細胞質染成紅色或淡紅色,被酸性染料染色的結構具有嗜酸性。染色前,須用二甲苯脫去切片中的石蠟,再經由高濃度到低濃度酒精,最后入蒸餾水,就可染色。

HE染色過程是:?

①將已入蒸餾水后的切片放入蘇木精水溶液中染色數分鐘。?

②酸水及氨水中分色,各數秒鐘。?

③流水沖洗1小時后入蒸餾水片刻。?

④入70%和90%酒精中脫水各10分鐘。?

⑤入酒精伊紅染色液染色2—3分鐘。

?6、脫水透明:?

染色后的切片經純酒精脫水,再經二甲苯使切片透明。

?7、封固:?

將已透明的切片滴上加拿大樹膠,蓋上蓋玻片封固。待樹膠略干后,貼上標箋,切片標本就可使用

希望能幫的上你的忙啊

如何制作切片標本?

最為廣泛應用的方法:石蠟切片 不僅用于觀察正常細胞組織的形態結構,也是病理學和法醫學等學科用以研究、觀察及判斷細胞組織的形態變化的主要方法,而且也已相當廣泛地用于其他許多學科領域的研究中。教學中,光鏡下觀察切片標本多數是石蠟切片法制備的。活的細胞或組織多為無色透明,各種組織間和細胞內各種結構之間均缺乏反差,在一般光鏡下不易清楚區別出;組織離開機體后很快就會死亡和產生組織腐敗,失去原有正常結構,因此,組織要經固定、石蠟包埋、切片及染色等步驟以免細胞組織死亡,而能清晰辨認其形態結構。

石蠟切片制作基本技術 石蠟切片法包括取材、固定、洗滌和脫水、透明、浸蠟、包埋、切片與粘片、脫蠟、染色、脫水、透明、封片等步驟。一般的組織從取材固定到封片制成玻片標本需要數日,但標本可以長期保存使用,為永久性顯微玻片標本。

誰有組織切片的制作過程

一、制備顯微標本的切片62616964757a686964616fe4b893e5b19e31333330323262法

一石蠟包埋切片制作法

這是最常用的切片法。以石蠟作為組織的填充支持介質,將整塊組織加以包埋,最后凝固成均勻一致的固態結構。用切片機制取極薄的切片。為了讓石蠟能浸入組織內部,需將組織經過脫水等處理。過程大致如下:

⑴固定:生物標本脫離機體或培養環境,細胞會發生自溶,腐敗分解。因此,需用固定劑處理,使蛋白質凝固停止瀕死或死后變化。凡供永久保存的標本都需經固定處理。

常用的固定劑是甲醛、乙醇等,能使蛋白質凝固。還有由幾種試劑配成的固定液,例如Carnoy固定液,由無水酒精、氯仿、冰醋酸配成,固定力更快更強,不含水分,可避免水溶性物質如糖原等在固定過程中損失。

⑵脫水:是將組織細胞所含水分除去。通常用乙醇(Alcohol,酒精),濃度遞升到 100%。此過程還使組織塊進一步硬化。

⑶透明:是用既能溶于純酒精又能融解石蠟的有機溶劑,將組織中的酒精取代,以便石蠟浸入。通常用二甲苯(xylene)為透明劑。

⑷浸蠟:在溫箱內進行。已透明的組織塊放入加熱融解的石蠟中,讓石蠟浸透組織,作為支持介質。

⑸包埋:將已浸蠟的組織塊放入熱融的包埋石蠟中,迅速冷凝,組織決便被蠟包埋。

⑹切片:用切片機。常用的切片機有輪轉式、平推式的。用輪轉式的易于切出連續切片。切片厚度隨制片目的而調整。教學標本厚度多是5~6μm。

⑺貼片烤干:石蠟切片在溫水上展平后,移在玻片上,烤干,即可供染色處理。染色后用樹膠、蓋坡片封固,可永久保存。

二冷凍切片法

冷凍切片法是借組織在低溫下,凍結變硬而達到符合切片要求。冷凍切片法需有冷凍切片機,或在普通切片上配制冷設施。恒冷切片機是高級冷凍切片設備。它有一個恒冷箱,標本致冷臺和切片機都裝在箱內。恒冷箱的作用類似冰箱,可在一定范圍內調整溫度,其結構有利于保持箱內恒定低溫,減少箱門打開時環境溫度的干擾。切片機的輪轉把手裝在箱外,便于操縱切片。

冷凍切片法的優點是:在處理得當時,它可以最大限度地保持組織的新鮮狀態。并且,由于不需經脫水、透明、浸蠟等過程中有機溶劑的處理,及濕箱浸蠟熱的影響,甚至可不經固定。所以能很好地保存組織細胞的各種成分和酶的活性,因此在酶的組織化學研究中常用此切片法。

二、顯示標本結構成分的染色法

一蘇木素伊紅染色法(HE染色法)

為最常用的染色法。該法應用于各種組織的染色,是組織學技術的基本方法,對任何液體固定的組織和各種包埋的切片均可使用,只是對不同包埋的切片法處理略有不同。下面簡介石蠟包埋切片的HE染色法。

1、脫蠟:石蠟切片的組織內部充滿石蠟,不能使水溶性染液著色,因此在染色前必須首先用二甲苯將石蠟脫掉,共兩次。

2、下行入水:將已脫蠟的標本浸入無水酒精及各級酒精,使組織逐步接近水。3、蒸餾水略洗。

4、蘇木素溶液染色約5—15分鐘

5、自來水洗去多余染料。

6、入稀釋的鹽酸酒精溶液中分色,邊分色邊鏡檢,至核呈紅紫色,細胞質無

色為合適。

7、分色后用自來水或加數滴氨水堿化,直至細胞核變成藍色。這一步驟也可稱為“藍化”。

8、入蒸餾水洗去堿性水分。

9、入70%酒精→80%酒精各5分鐘。

10、入伊紅染液染色30秒至數分鐘。

11、以95%酒精對伊紅分色,至胞漿,結締組織等呈桃紅色。

12、上行脫水:染色后的切片,因組織內含水而不透明,不能清晰地觀察其微細結構。因此,須將組織內的水分經各級酒精→無水酒精逐步置換,最后進入不含水份的透明劑內。

13、透明:入二甲苯透明劑,二次(各數分鐘)。

14、取出切片:將組織周圍多余的二甲苯擦去,滴樹膠后加蓋玻片封固。

結果:細胞核藍紫色,胞漿、膠原纖維、肌纖維為桃紅色,嗜酸性顆粒為鮮紅色,彈性纖維呈明亮桃紅色。

二組織化學和細胞化學染色法

組織化學和細胞化學,是將物理和化學的技術運用到組織標本,用顯微鏡和化學分析方法來研究組織和細胞內的化學成分,并觀察該化學成分在組織、細胞內的定位、含量及其變化規律。這些化學成分借著化學反應所產生的不溶性著色物質來顯示。對于某些化學成分,例如:Fe++糖原、核酸等,可以用直接或間接的化學反應產生著色沉淀而顯示其部位和相對含量。對于酶類,顯示它的活性,須有該種酶的底物(被該種酶作用的物質),由酶對底物的分解,直接或間接地生成著色物質而被顯示。凡是在光學顯微鏡下觀察細胞原位顯示的化學物質,稱組織化學,若用電鏡觀察細胞原位化學成分的著色部位,則稱電鏡細胞化學,下面從原理方面簡要介紹幾種常用的組織化學染色技術:

1、顯示琥珀酸脫氫酶(SDH)活性的硝基-BT法:

(Succinate dehydrogenase)

⑴酶的定位及生物學意義:

琥珀酸脫氫酶是線粒體標志酶,其存在于所有有氧呼吸的細胞,和線粒體內膜緊密結合。該酶不需輔酶而自身有黃素蛋白(FP,Flavoprotein)為輔基。在組化反應中常用來反映三羧酸循環的情況。其催化過程如下:

弱-單甲(紫紅色)

HOOC-CH2-CH2-COOHFPH2四唑(甲)↓

(有色)強-雙甲(深紫藍色)

(琥珀酸)(黃素蛋白)

HOOC-CH=CH=COOHFPH2四唑(無色)

(延胡索酸)

⑵原理:上述的反應最后一步的原理是,硝基-BT(Nitro-blue tetrozolyum,四唑氮藍)系異環族化合物四唑鹽,當它接受氫時,本身被還原為有色沉淀產物(甲

)(Formazan)。

⑶孵育液配制:

A液(貯備液)

0.2M磷酸緩沖液(PH7.6)10ml等量混合

0.2M琥珀酸鈉(S01.succinate) 10ml備用

B液:

硝基四唑(Nitro-Br)2mg

2ml

0.2M磷酸緩沖液(PH7.6) 2ml

取:A液2ml

B液2ml孵育液

聚乙烯吡烷酮(PVP) 300mg

⑷方法:

①新鮮恒冷箱冷凍切片,厚6~8μm,平貼在蓋玻片上。

②滴染法:將有冷凍切片的蓋玻片(標本面朝上)平放于預熱好的培養皿中(底部墊一濕濾紙),滴加孵育液至全部覆蓋組織,于37℃溫箱中孵育45~60分鐘(肝,心肌組織15分鐘即可)。

③于生理鹽水中沖洗二次(輕晃,以防脫片)。

④10%福爾馬林生理鹽水固定10分鐘。

⑤15%酒精浸洗5分鐘(換二次)。

⑥甘油明膠封片。

⑸結果:酶活性強處呈藍色顆粒(雙甲沉淀),酶活性較低時形成紫紅色單甲。在光鏡下,該酶活性于肝小葉內分布呈明顯分帶現象,周邊帶強于中央帶。在心肌細胞縱切面,酶活性顆粒沿心肌細胞長軸整齊排列,相鄰心肌細胞的空白處為閏盤。

2、顯示葡萄糖-6-磷酸酶(G-6-Pase)活性的鉛法:

(Glucosel-phosphate phosphohydrolase)

①酶的定位及其生物學意義:

該酶主要位于內質網,是內質網的標志酶。G-6-Pase參與糖代謝,能水解葡萄糖-6-磷酸而釋放出葡萄糖和磷酸。

⑵原理:G-6-Pase將底物(葡萄糖-6-磷酸鉀鹽)水解產生磷酸離子,后者被孵育液中的硝酸鉛所捕獲,最終反應物為顆粒狀的硫化鉛沉淀,其反應式如下:

酶Pb(NO3)2

葡萄糖-6-磷酸鉀+H2O葡萄糖+磷酸

(NH4)2S

Pb2(PO4)2PbS↓

(無色)(棕色)

(試劑配制及方法詳見組織學技術專著)

⑶結果:酶活性部位呈棕色硫化鉛顆粒沉淀。在光鏡下G-6-Pase活性顆粒較均勻地分布于胞質中。

3、顯示堿性磷酸酶(APL)的鈣鈷法(Alkaline phosphohydrolase)

⑴酶的定位及其生物學意義:

ALP在堿性環境下能催化各種醇和酚的磷酸酯水解,參與磷酸根的跨膜轉運過程,并有磷酸轉移的作用,故在細胞膜上運輸較活躍,如毛細血管內皮細胞,腎近曲小管刷狀緣,腸上皮紋狀緣等處,該酶的活性較高。

⑵原理:ALP將磷酸鹽底物(如β-甘油磷酸鈉等)分解產生磷酸根離子,后者為孵育液中的氯化鈣捕獲生成磷酸鈣沉淀,但該沉淀為非金屬鹽,需加入硝酸鈷,使其生成磷酸鈷沉淀,因無色,再需通過硫化銨處理,形成棕黑色硫化鈷沉淀而被顯示。在PH9.2—9.4環境中表現最大活性。反應式如下:

ALPCa++

β-甘油磷酸鈉磷酸離子Ca2(PO4)2

Co(NO3)2(NH4)2S

CO2(PO4)2CoS↓

(無色)(棕黑色)

⑶結果:酶活性部位為棕黑色CoS沉淀。

4、顯示核酸的甲綠一派喏寧(Methyl green-pyronln)染色:

⑴原理:甲綠和派喏寧都是堿性染料,對兩種核酸(DNA和RNA)能分別染色,其機制可能在于兩種核酸分子都是多聚體,但聚合程度有所不同。甲綠具有兩個帶電荷的氨基,而派喏寧只有一個。因此在混合的染液中,二者競爭的結果是甲綠易與聚合程度較高的DNA結合呈現藍綠色,而派喏寧則與聚合程度較低的RNA結合呈現紅色。

(試劑制備及方法詳見組織學技術專著)

⑶結果:核內DNA呈藍綠色,核仁及胞質內RNA呈桃紅色。

5、顯示糖原的過碘酸雪夫氏(PAS)反應:

⑴原理:糖原是一種動物多糖,無色,富含于肝細胞和肌細胞胞質中。PAS反應(Periodic acid schiff Reaction)能在糖原所在部位生成紫紅色物質,從而將之顯示。RAS反應分為兩步:首先是強氧化劑過碘酸(Periodic acid,分子式為HIO4),將糖原中的葡萄糖分子的C-C鍵打開,將CHOH-CHOH氧化,生成二醛基,然后Schiff試劑中的無色亞硫酸品紅分子與糖的醛基結合,生成新的紫紅色復合物。

HIO4schiff試劑

多糖醛基紫紅色反應產物

(氧化)

(試劑配制及方法詳見組織學技術專著)

⑵結果:糖原呈紫紅色顆粒狀。

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