石蠟切片的制作方法？
腸道的石蠟切片的制作
（1） 取材：用鋒利的刀切取羅非魚的一小段前腸（據(jù)胃5cm左右位置的前腸），組織塊的規(guī)格為 3～5mm×3～5mm×10～15mm。
（2） 固定：采用Bouin氏固定液裝瓶固定，固定液用量一般為組織塊體積的10～20倍。
（3） 沖洗：固定12～24h后，將材料自固定液中取出后，在70%酒精中換洗幾次，可在酒精中加幾滴氨水至洗去黃色為止。
（4） 脫水：70%酒精（1h）→80%酒精（1h）→90%酒精（1h）→95%酒精（1h）→無水乙醇Ⅰ（1h）→無水乙醇Ⅱ（1h）
（5） 透明：無水乙醇與二甲苯溶液（1:1）（1h）→二甲苯Ⅰ（1h）→二甲苯Ⅱ
（1h）
（6） 浸蠟：浸蠟的全過程應在恒溫設(shè)備中進行，將恒溫箱調(diào)至58℃。
二甲苯與石蠟混合液（1:1）（1h）→石蠟Ⅰ（1h）→石蠟Ⅱ（1h）
浸蠟必須徹底，否則組織內(nèi)殘留透明劑會造成切片過程的困難和影響切片
的質(zhì)量。
（7） 包埋：在小紙盒內(nèi)注入溶化的石蠟，將已浸蠟的組織塊置入其內(nèi)，使蠟塊迅速冷卻硬固，組織塊在蠟塊中可長期保存。
（8） 切片：包埋后的組織塊經(jīng)修整后，用切片機切成5~7μm的石蠟帶。
（9） 粘片：將組織石蠟帶在50攝氏度的溫水中展片，然后用經(jīng)1%HCl溶液處理干凈的載玻片撈片，組織帶即可粘在載玻片上。
（10） 烤片：將粘好的載玻片置于35℃左右的溫箱中烤干，待2~3小時后，即可取下編號。
（11） 蘇木精—伊紅染色：將烤干的片進行染色。
①脫蠟：將烤干的切片放入二甲苯(I)10min→二甲苯(Ⅱ)10rain。
②復水：將脫蠟后的切片移入100％酒精5min→95％酒精5min→85％酒精5min→70％酒精5min→蒸餾水5min
③HE染色顯示腸道黏膜上皮內(nèi)淋巴細胞：將蒸餾水洗滌后的切片移入Harris蘇木精液中，10min，使細胞核著色；用自來水洗去切片上殘余染液；用1％的鹽酸酒精分色3秒；用自來水浸洗3h，顯微鏡下觀察，直到胞核藍化為止；然后切片入曙紅溶液中染色5min，使細胞質(zhì)著色。經(jīng)95％酒精與100％酒精脫水，二甲苯透明后，中性樹膠封片。
④奧新蘭一沙黃染色顯示腸道內(nèi)肥大細胞：切片常規(guī)脫蠟下行至蒸餾水→奧新蘭一沙黃液染色15～20min→蒸餾水速洗，鏡檢→95％和100％酒精分色脫水1—2min→二甲苯透明→中性樹膠封片。
⑤阿利新蘭醋酸染色顯示腸道內(nèi)杯狀細胞：切片經(jīng)脫蠟下行入蒸餾水→阿利新蘭醋酸染色10min→蒸餾水洗→1％高碘酸水液氧化5min→蒸餾水略洗一Schiff試劑染色（37℃恒溫箱）30min→普通水洗3次→蒸餾水2min→Ehrlich蘇木精染色5min→95％酒精和100％酒精脫水→二甲苯透明，中性樹膠封片。
切片經(jīng)脫蠟下行入水：二甲苯(30 min)一二甲苯(10 min)一無水乙醇(5 min)一無水乙醇(5 min)一
95％ 乙醇(5 min)一85％乙醇(5 min)一70％ 乙醇(5 min)一流水沖洗(20 min)。人Ehrlich蘇木精染
色12 min，蒸餾水速洗。鹽酸酒精分色，鏡檢控制時間。入伊紅染色2 min，蒸餾水略洗。鹽酸酒精分色，鏡檢控制時間。經(jīng)95％酒精與無水酒精脫水，二甲苯透明，中性樹膠封片。
阿利新蘭—番紅復合染色液的方法稱Scaba法
阿利新蘭—番紅分別染色的方法稱Spicer法
石蠟切片如何快速操作完成？
（一）應用范圍
（1）替代冷凍切片，在沒有條件制作冷凍切片的單位，用作術(shù)中診斷；
（2）快速診斷：適用于門診外地患者，1天可取報告。
（二）切片制作
（1） 將送檢的各類組織按《規(guī)范》（一）編號登記、眼觀、描述記錄后，用大頭針和羊皮紙包好，投入配制好的固定液燒杯內(nèi)5~10min(固定液配制：95％乙醉85ml，甲醛10ml，冰醋酸5ml)；若組織較厚，可在預固定后修薄，重復固定；
（2）無水乙醇、丙酮脫水3~5min；
（3）浸蠟5min；
（4）常規(guī)石蠟包埋，或封固于預制好的蠟塊內(nèi)；
（5）常規(guī)HE加溫染色。
（三）注意事項
（1） 制作快速石蠟切片全過程過程均加溫在65~72℃范圍內(nèi)操作，可用快速組織處理儀、或在恒溫水浴鍋或恒溫箱內(nèi)完成；
（2） 替代冷凍切片可隨到即做，一般在30min內(nèi)完成；若成批操作，則可根據(jù)標本的數(shù)量多少，酌情延長時間；
（3） 制作快速石蠟切片，操作人員必須經(jīng)過一段時間的訓練和摸索，在取得一定經(jīng)驗、技術(shù)較熟練能保證切片質(zhì)量后，方可受理對外服務，以把好質(zhì)量關(guān)
如何制作石蠟切片?
[1]請教丁老師如何制作皮膚的石蠟切片
一 皮膚組織標本制作及常用染色方法概述
皮膚組織標本常規(guī)以福爾馬林固定，石蠟包埋，蘇木素－伊紅(Hematoxylin eosin HE)染色。皮膚組織的制片及染色技術(shù)與普通病理相同：標本固定－水洗－硬化、脫水－透明－包埋－切片－染色。但皮膚組織亦有其自身特點，如表皮細胞層次多，纖維及脂肪組織豐富，在取材及固定方面有其特殊性，制片及染色過程也應注意其特點，以提高制片質(zhì)量。
二 取材
a取材要足夠大，應包括一小部分正常組織，以便與病理組織對照，因許多皮膚病的典型病變在真皮深層或皮下組織，故還應包括皮下組織,
b多數(shù)情況下應選擇充分發(fā)展的損害，早期損害常為非特異性，晚期損害的病變大都處于恢復或變性、壞死階段，充分發(fā)展的損害容易找到典型病變而明確診斷，還應盡量選擇損害的活動邊緣部分，中央部分可能病變已趨向于消退而找不出典型病變。對于水皰性、膿皰性以及含有病原體的損害應取早期損害，否則，若發(fā)生繼發(fā)性改變(如變性、再生或繼發(fā)性感染)可能隱蔽了重要病變的組織形態(tài)，同時，很難辨別病變形成的過程,
c盡量避免切除腋窩或腹股溝等部位皮膚組織，因該處皮膚由于磨擦，搔抓等常有萎縮,
d如疑有血管性或血液性疾患，最好不要取下肢標本，因下肢常有血液停滯或其它肢端血管病，皮內(nèi)可能有含鐵血黃素沉著,
e對某些腫瘤，如角化棘皮瘤，Spitz痣等，應盡可能將腫瘤全部切除，若不能全部切除，則最好自腫瘤中心至邊緣取一楔形標本，以供組織學檢查。
三 固定
切下皮膚愈早固定愈好，夏天超過4小時，冬天超過24小時，標本體積就要收縮變形或發(fā)生自溶。常用固定液為10％中性福爾馬林，其總體積應為組織塊總體積的7～10倍，用10％福爾馬林固定小塊組織(1.5 cm×1.5 cm×0.2cm)數(shù)小時即可，時間稍長對制片影響不大，隨著溫度的增高可縮短固定時間，對固定時間過長的標本，可在制作切片時，用流水沖洗24小時，甚至48小時，以免影響染色效果。
四 脫水、包埋、切片及染色
皮膚組織常用酒精脫水、二甲苯透明、石蠟包埋，切片厚度一般為5μm～7μm，與普通病理切片操作程序相同。HE染色法方便、經(jīng)濟，結(jié)果穩(wěn)定，95％以上的組織切片都可以在HE染色下作出診斷，是皮膚組織病理最常用的方法。
[2]http://www.pathology-home.com/html/pathology/20051207_1.asp
自己點進去看吧，太多了 復制不了
小鼠肝組織石蠟切片具體怎么做？
一般來說是要的，但也要根據(jù)具體實驗要求決定（比如你要觀察一些什么東西啦，對結(jié)構(gòu)的完整性要求有多高啦）甲醛能固定一般組織，但溶解肝糖和色素。
注意：1.材料必須新鮮，擱置時間過久則產(chǎn)生蛋白質(zhì)分解變性，導致細胞自溶及細菌的滋生，而不能反映組織活體時的形態(tài)結(jié)構(gòu)。
2.固定液的種類很多，其對組織的硬化收縮程度以及組織內(nèi)蛋白質(zhì)、脂肪、糖類等物質(zhì)的e799bee5baa6e79fa5e98193e4b893e5b19e31333239306636作用各不相同。例如純酒精可固定肝糖而能溶解脂肪，甲醛能固定一般組織，但溶解肝糖和色素。固定液可分為單一固定液及混合固定液。前者有甲醛（蟻醛、福爾馬林）、酒精、醋酸或冰醋酸、升汞、鋨酸（四氧化鋨）、重鉻酸鉀及苦味酸等，單一固定液不能固定細胞中的所有成分；混合固定液可以互補不足，常用的混合固定液有Bouin氏液、Zenker氏液、FAA液、Carnoy氏液、SuSa液（配方見有關(guān)技術(shù)書籍）。
過程：
1.取材
2.固定
3.洗滌與脫水
4.透明
5.浸蠟與包埋
6.切片
7.貼片與烤片
8.切片脫蠟及水化
9.染色
10.切片脫水、透明和封片
切片刀的銳利與否、蠟塊硬度適當都直接影響切片質(zhì)量，可用熱水或冷水等方法適當改變蠟塊硬度。通常切片厚度為4～7微米，切出一片接一片的蠟帶，用毛筆輕托輕放在紙上。
小鼠脾臟石蠟切片如何制作
你碰對人了,正好我這些天在做假復層立方上皮的切片 其實切片很好做,最關(guān)鍵的就是你的切片機切出的薄厚怎么樣 下面我給你說說程序:1、取材與固定:
小鼠肺石蠟切片如何制作
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其實切片很好做,最關(guān)鍵的就是你的切片機切出的薄厚怎么樣
下面我給你說說程序:
1、取材與固定：?
從人或動物新鮮尸體上取下組織塊(一般厚度不超過0．5厘米)投入預先配好的固定液中(10％福爾馬林，Bouin氏固定液等)使組織、細胞的蛋白質(zhì)變性凝固，以防止細胞死后的自溶或細菌的分解，從而保持細胞本來的形態(tài)結(jié)構(gòu)。?
2、脫水透明：
一般用由低濃度到高濃度酒精作脫水劑，逐漸脫去組織塊中的水份。再將組織塊置于既溶于酒精，又溶于石蠟的透明劑二甲苯中透明，以二甲苯替換出組織塊的中酒精，才能浸蠟包埋。
?3、浸蠟包埋：
將已透明的組織塊置于已溶化的石蠟中，放入溶蠟箱保溫。待石蠟完全浸入組織塊后進行包埋：先制備好容器(如折疊一小紙盒)，倒入已溶化的石蠟，迅速夾取已浸透石蠟的組織塊放入其中。冷卻凝固成塊即成。包埋好的組織塊變硬，才能在切片機上切成很薄的切片。
?4、切片與貼片：?
將包埋好的蠟塊固定于切片機上，切成薄片，一般為5—8微米厚。切下的薄片往往皺折，要放到加熱的水中燙平，再貼到載玻片上，放45℃恒溫箱中烘干。
?5、脫蠟染色：?
常用HE染色，以增加組織細胞結(jié)構(gòu)各部分的色彩差異，利于觀察。蘇木精(Hematoxylin，H)是一種堿性染料，可將細胞核和細胞內(nèi)核糖體染成藍紫色，被堿性染料染色的結(jié)構(gòu)具有嗜堿性。伊紅(Eosin，E)是一種酸性染料，能將細胞質(zhì)染成紅色或淡紅色，被酸性染料染色的結(jié)構(gòu)具有嗜酸性。染色前，須用二甲苯脫去切片中的石蠟，再經(jīng)由高濃度到低濃度酒精，最后入蒸餾水，就可染色。
HE染色過程是：?
①將已入蒸餾水后的切片放入蘇木精水溶液中染色數(shù)分鐘。?
②酸水及氨水中分色，各數(shù)秒鐘。?
③流水沖洗1小時后入蒸餾水片刻。?
④入70％和90％酒精中脫水各10分鐘。?
⑤入酒精伊紅染色液染色2—3分鐘。
?6、脫水透明：?
染色后的切片經(jīng)純酒精脫水，再經(jīng)二甲苯使切片透明。
?7、封固：?
將已透明的切片滴上加拿大樹膠，蓋上蓋玻片封固。待樹膠略干后，貼上標箋，切片標本就可使用
希望能幫的上你的忙啊
如何制作切片標本？
最為廣泛應用的方法:石蠟切片 不僅用于觀察正常細胞組織的形態(tài)結(jié)構(gòu)，也是病理學和法醫(yī)學等學科用以研究、觀察及判斷細胞組織的形態(tài)變化的主要方法，而且也已相當廣泛地用于其他許多學科領(lǐng)域的研究中。教學中，光鏡下觀察切片標本多數(shù)是石蠟切片法制備的。活的細胞或組織多為無色透明，各種組織間和細胞內(nèi)各種結(jié)構(gòu)之間均缺乏反差，在一般光鏡下不易清楚區(qū)別出；組織離開機體后很快就會死亡和產(chǎn)生組織腐敗，失去原有正常結(jié)構(gòu)，因此，組織要經(jīng)固定、石蠟包埋、切片及染色等步驟以免細胞組織死亡，而能清晰辨認其形態(tài)結(jié)構(gòu)。
石蠟切片制作基本技術(shù) 石蠟切片法包括取材、固定、洗滌和脫水、透明、浸蠟、包埋、切片與粘片、脫蠟、染色、脫水、透明、封片等步驟。一般的組織從取材固定到封片制成玻片標本需要數(shù)日，但標本可以長期保存使用，為永久性顯微玻片標本。
誰有組織切片的制作過程
一、制備顯微標本的切片62616964757a686964616fe4b893e5b19e31333330323262法
一石蠟包埋切片制作法
這是最常用的切片法。以石蠟作為組織的填充支持介質(zhì)，將整塊組織加以包埋，最后凝固成均勻一致的固態(tài)結(jié)構(gòu)。用切片機制取極薄的切片。為了讓石蠟能浸入組織內(nèi)部，需將組織經(jīng)過脫水等處理。過程大致如下：
⑴固定：生物標本脫離機體或培養(yǎng)環(huán)境，細胞會發(fā)生自溶，腐敗分解。因此，需用固定劑處理，使蛋白質(zhì)凝固停止瀕死或死后變化。凡供永久保存的標本都需經(jīng)固定處理。
常用的固定劑是甲醛、乙醇等，能使蛋白質(zhì)凝固。還有由幾種試劑配成的固定液，例如Carnoy固定液，由無水酒精、氯仿、冰醋酸配成，固定力更快更強，不含水分，可避免水溶性物質(zhì)如糖原等在固定過程中損失。
⑵脫水：是將組織細胞所含水分除去。通常用乙醇（Alcohol，酒精），濃度遞升到 100%。此過程還使組織塊進一步硬化。
⑶透明：是用既能溶于純酒精又能融解石蠟的有機溶劑，將組織中的酒精取代，以便石蠟浸入。通常用二甲苯（xylene）為透明劑。
⑷浸蠟：在溫箱內(nèi)進行。已透明的組織塊放入加熱融解的石蠟中，讓石蠟浸透組織，作為支持介質(zhì)。
⑸包埋：將已浸蠟的組織塊放入熱融的包埋石蠟中，迅速冷凝，組織決便被蠟包埋。
⑹切片：用切片機。常用的切片機有輪轉(zhuǎn)式、平推式的。用輪轉(zhuǎn)式的易于切出連續(xù)切片。切片厚度隨制片目的而調(diào)整。教學標本厚度多是5~6μm。
⑺貼片烤干：石蠟切片在溫水上展平后，移在玻片上，烤干，即可供染色處理。染色后用樹膠、蓋坡片封固，可永久保存。
二冷凍切片法
冷凍切片法是借組織在低溫下，凍結(jié)變硬而達到符合切片要求。冷凍切片法需有冷凍切片機，或在普通切片上配制冷設(shè)施。恒冷切片機是高級冷凍切片設(shè)備。它有一個恒冷箱，標本致冷臺和切片機都裝在箱內(nèi)。恒冷箱的作用類似冰箱，可在一定范圍內(nèi)調(diào)整溫度，其結(jié)構(gòu)有利于保持箱內(nèi)恒定低溫，減少箱門打開時環(huán)境溫度的干擾。切片機的輪轉(zhuǎn)把手裝在箱外，便于操縱切片。
冷凍切片法的優(yōu)點是：在處理得當時，它可以最大限度地保持組織的新鮮狀態(tài)。并且，由于不需經(jīng)脫水、透明、浸蠟等過程中有機溶劑的處理，及濕箱浸蠟熱的影響，甚至可不經(jīng)固定。所以能很好地保存組織細胞的各種成分和酶的活性，因此在酶的組織化學研究中常用此切片法。
二、顯示標本結(jié)構(gòu)成分的染色法
一蘇木素伊紅染色法（HE染色法）
為最常用的染色法。該法應用于各種組織的染色，是組織學技術(shù)的基本方法，對任何液體固定的組織和各種包埋的切片均可使用，只是對不同包埋的切片法處理略有不同。下面簡介石蠟包埋切片的HE染色法。
1、脫蠟：石蠟切片的組織內(nèi)部充滿石蠟，不能使水溶性染液著色，因此在染色前必須首先用二甲苯將石蠟脫掉，共兩次。
2、下行入水：將已脫蠟的標本浸入無水酒精及各級酒精，使組織逐步接近水。3、蒸餾水略洗。
4、蘇木素溶液染色約5—15分鐘
5、自來水洗去多余染料。
6、入稀釋的鹽酸酒精溶液中分色，邊分色邊鏡檢，至核呈紅紫色，細胞質(zhì)無
色為合適。
7、分色后用自來水或加數(shù)滴氨水堿化，直至細胞核變成藍色。這一步驟也可稱為“藍化”。
8、入蒸餾水洗去堿性水分。
9、入70%酒精→80%酒精各5分鐘。
10、入伊紅染液染色30秒至數(shù)分鐘。
11、以95%酒精對伊紅分色，至胞漿，結(jié)締組織等呈桃紅色。
12、上行脫水：染色后的切片，因組織內(nèi)含水而不透明，不能清晰地觀察其微細結(jié)構(gòu)。因此，須將組織內(nèi)的水分經(jīng)各級酒精→無水酒精逐步置換，最后進入不含水份的透明劑內(nèi)。
13、透明：入二甲苯透明劑，二次（各數(shù)分鐘）。
14、取出切片：將組織周圍多余的二甲苯擦去，滴樹膠后加蓋玻片封固。
結(jié)果：細胞核藍紫色，胞漿、膠原纖維、肌纖維為桃紅色，嗜酸性顆粒為鮮紅色，彈性纖維呈明亮桃紅色。
二組織化學和細胞化學染色法
組織化學和細胞化學，是將物理和化學的技術(shù)運用到組織標本，用顯微鏡和化學分析方法來研究組織和細胞內(nèi)的化學成分，并觀察該化學成分在組織、細胞內(nèi)的定位、含量及其變化規(guī)律。這些化學成分借著化學反應所產(chǎn)生的不溶性著色物質(zhì)來顯示。對于某些化學成分，例如：Fe++糖原、核酸等，可以用直接或間接的化學反應產(chǎn)生著色沉淀而顯示其部位和相對含量。對于酶類，顯示它的活性，須有該種酶的底物（被該種酶作用的物質(zhì)），由酶對底物的分解，直接或間接地生成著色物質(zhì)而被顯示。凡是在光學顯微鏡下觀察細胞原位顯示的化學物質(zhì)，稱組織化學，若用電鏡觀察細胞原位化學成分的著色部位，則稱電鏡細胞化學，下面從原理方面簡要介紹幾種常用的組織化學染色技術(shù)：
1、顯示琥珀酸脫氫酶（SDH）活性的硝基-BT法：
（Succinate dehydrogenase）
⑴酶的定位及生物學意義：
琥珀酸脫氫酶是線粒體標志酶，其存在于所有有氧呼吸的細胞，和線粒體內(nèi)膜緊密結(jié)合。該酶不需輔酶而自身有黃素蛋白（FP,Flavoprotein）為輔基。在組化反應中常用來反映三羧酸循環(huán)的情況。其催化過程如下：
弱-單甲（紫紅色）
HOOC-CH2-CH2-COOHFPH2四唑（甲）↓
（有色）強-雙甲（深紫藍色）
（琥珀酸）（黃素蛋白）
HOOC-CH=CH=COOHFPH2四唑（無色）
（延胡索酸）
⑵原理：上述的反應最后一步的原理是，硝基-BT（Nitro-blue tetrozolyum，四唑氮藍）系異環(huán)族化合物四唑鹽，當它接受氫時，本身被還原為有色沉淀產(chǎn)物（甲
）（Formazan）。
⑶孵育液配制：
A液（貯備液）
0.2M磷酸緩沖液（PH7.6）10ml等量混合
0.2M琥珀酸鈉（S01.succinate） 10ml備用
B液：
硝基四唑（Nitro-Br）2mg
2ml
0.2M磷酸緩沖液（PH7.6） 2ml
?。篈液2ml
B液2ml孵育液
聚乙烯吡烷酮（PVP） 300mg
⑷方法：
①新鮮恒冷箱冷凍切片，厚6~8μm，平貼在蓋玻片上。
②滴染法：將有冷凍切片的蓋玻片（標本面朝上）平放于預熱好的培養(yǎng)皿中（底部墊一濕濾紙），滴加孵育液至全部覆蓋組織，于37℃溫箱中孵育45~60分鐘（肝，心肌組織15分鐘即可）。
③于生理鹽水中沖洗二次（輕晃，以防脫片）。
④10%福爾馬林生理鹽水固定10分鐘。
⑤15%酒精浸洗5分鐘（換二次）。
⑥甘油明膠封片。
⑸結(jié)果：酶活性強處呈藍色顆粒（雙甲沉淀），酶活性較低時形成紫紅色單甲。在光鏡下，該酶活性于肝小葉內(nèi)分布呈明顯分帶現(xiàn)象，周邊帶強于中央帶。在心肌細胞縱切面，酶活性顆粒沿心肌細胞長軸整齊排列，相鄰心肌細胞的空白處為閏盤。
2、顯示葡萄糖-6-磷酸酶（G-6-Pase）活性的鉛法：
（Glucosel-phosphate phosphohydrolase）
①酶的定位及其生物學意義：
該酶主要位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)，是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的標志酶。G-6-Pase參與糖代謝，能水解葡萄糖-6-磷酸而釋放出葡萄糖和磷酸。
⑵原理：G-6-Pase將底物（葡萄糖-6-磷酸鉀鹽）水解產(chǎn)生磷酸離子，后者被孵育液中的硝酸鉛所捕獲，最終反應物為顆粒狀的硫化鉛沉淀，其反應式如下：
酶Pb(NO3)2
葡萄糖-6-磷酸鉀+H2O葡萄糖+磷酸
(NH4)2S
Pb2(PO4)2PbS↓
(無色)（棕色）
（試劑配制及方法詳見組織學技術(shù)專著）
⑶結(jié)果：酶活性部位呈棕色硫化鉛顆粒沉淀。在光鏡下G-6-Pase活性顆粒較均勻地分布于胞質(zhì)中。
3、顯示堿性磷酸酶（APL）的鈣鈷法（Alkaline phosphohydrolase）
⑴酶的定位及其生物學意義：
ALP在堿性環(huán)境下能催化各種醇和酚的磷酸酯水解，參與磷酸根的跨膜轉(zhuǎn)運過程，并有磷酸轉(zhuǎn)移的作用，故在細胞膜上運輸較活躍，如毛細血管內(nèi)皮細胞，腎近曲小管刷狀緣，腸上皮紋狀緣等處，該酶的活性較高。
⑵原理：ALP將磷酸鹽底物（如β-甘油磷酸鈉等）分解產(chǎn)生磷酸根離子，后者為孵育液中的氯化鈣捕獲生成磷酸鈣沉淀，但該沉淀為非金屬鹽，需加入硝酸鈷，使其生成磷酸鈷沉淀，因無色，再需通過硫化銨處理，形成棕黑色硫化鈷沉淀而被顯示。在PH9.2—9.4環(huán)境中表現(xiàn)最大活性。反應式如下：
ALPCa++
β-甘油磷酸鈉磷酸離子Ca2(PO4)2
Co(NO3)2(NH4)2S
CO2（PO4）2CoS↓
（無色）（棕黑色）
⑶結(jié)果：酶活性部位為棕黑色CoS沉淀。
4、顯示核酸的甲綠一派喏寧（Methyl green-pyronln）染色：
⑴原理：甲綠和派喏寧都是堿性染料，對兩種核酸（DNA和RNA）能分別染色，其機制可能在于兩種核酸分子都是多聚體，但聚合程度有所不同。甲綠具有兩個帶電荷的氨基，而派喏寧只有一個。因此在混合的染液中，二者競爭的結(jié)果是甲綠易與聚合程度較高的DNA結(jié)合呈現(xiàn)藍綠色，而派喏寧則與聚合程度較低的RNA結(jié)合呈現(xiàn)紅色。
（試劑制備及方法詳見組織學技術(shù)專著）
⑶結(jié)果：核內(nèi)DNA呈藍綠色，核仁及胞質(zhì)內(nèi)RNA呈桃紅色。
5、顯示糖原的過碘酸雪夫氏（PAS）反應：
⑴原理：糖原是一種動物多糖，無色，富含于肝細胞和肌細胞胞質(zhì)中。PAS反應（Periodic acid schiff Reaction）能在糖原所在部位生成紫紅色物質(zhì)，從而將之顯示。RAS反應分為兩步：首先是強氧化劑過碘酸（Periodic acid,分子式為HIO4），將糖原中的葡萄糖分子的C-C鍵打開，將CHOH-CHOH氧化，生成二醛基，然后Schiff試劑中的無色亞硫酸品紅分子與糖的醛基結(jié)合，生成新的紫紅色復合物。
HIO4schiff試劑
多糖醛基紫紅色反應產(chǎn)物
（氧化）
（試劑配制及方法詳見組織學技術(shù)專著）
⑵結(jié)果：糖原呈紫紅色顆粒狀。
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種皮不必做石蠟切片,只有比較軟,切容易變形破壞的才做石蠟切片 如果想做也可以,參見以下,非常好!http://swzx.jlu.edu.cn/jpk/sykj/20051009/sl.files/frame.htm